Mouches spécialisées du figuier (Silba adipata, Zaprionus indianus)
Fiabilité : haute
Mouches spécialisées du figuier — Silba adipata et Zaprionus indianus
En bref. Deux diptères distincts à ne pas confondre. Silba adipata (Lonchaeidae) : mouche noire monophage stricte du figuier, pond dans les figues vertes. Zaprionus indianus (Drosophilidae) : généraliste invasive d’origine africaine, ne pond que dans les fruits déjà lésés. Stratégies de contrôle différentes selon l’espèce ciblée.
Au-delà de Drosophila suzukii (généraliste invasif récent, fiche dédiée), deux autres diptères posent une pression spécifique sur le figuier. Ils sont parfois confondus sous l’appellation populaire « mouche du figuier » mais différent radicalement :
- Silba adipata McAlpine (Diptera, Lonchaeidae) — la mouche noire du figuier, monophage strict de Ficus carica, ravageur historique méditerranéen aujourd’hui invasif en Amérique.
- Zaprionus indianus Gupta (Diptera, Drosophilidae) — la mouche africaine du figuier, généraliste invasive, présente sur figue mais aussi 80+ autres fruits.
1. Silba adipata — la mouche noire du figuier
Distribution et statut invasif
[ÉTABLI] Originaire du bassin méditerranéen et du Moyen-Orient, S. adipata est documentée comme ravageur majeur en :
- Grèce, Turquie, Italie, France méditerranéenne, Espagne, Algérie, Tunisie, Maroc, Égypte, Israël, Liban, Crimée — aire historique.
- Mexique — première observation 2014, désormais établie (Hernández-Ortiz et al. 2024, Insects).
- États-Unis — première détection 2022 en Californie (Burrack et al. 2022, Journal of Integrated Pest Management). Ravageur émergent en Amérique du Nord avec une expansion potentielle inquiétante pour l’industrie californienne.
- Afrique du Sud — détections récentes documentées.
[ÉTABLI] S. adipata est désormais inscrite sur liste de quarantaine USDA-APHIS depuis 2024 — statut réglementaire élevé.
Morphologie et biologie
[ÉTABLI] Caractéristiques (Katsoyannos 1983, Zeitschrift für Angewandte Entomologie ; Hernández-Ortiz et al. 2024) :
- Adulte : 3 à 4 mm, noir brillant caractéristique, sans tache alaire (à la différence de D. suzukii).
- Femelle : ovipositeur en lance long, 994 ± 58 µm, à fente longitudinale — adaptation pour traverser les bractées ostiolaires des sycones immatures.
- Cycle : œuf → adulte en 14 à 28 jours selon climat.
- 3 à 5 générations annuelles en climat méditerranéen.
- Pontes : groupes de 2 à 10 œufs insérés sous les bractées ostiolaires des sycones immatures — particularité décisive (cf. ci-dessous).
Spécificité d’hôte unique — le rôle du latex
[ÉTABLI] Silba adipata est strictement monophage sur Ficus carica. Aucun autre hôte végétal n’a été documenté en conditions naturelles. La femelle utilise le latex du figuier comme stimulus pour la maturation sexuelle et l’oviposition (Sanchez et al. 2025, Insects) — adaptation chimique extrêmement spécialisée.
[ÉTABLI] Observations expérimentales (Sanchez et al. 2025) :
- Protéines alimentaires essentielles au développement des œufs.
- Latex de figuier consommé lorsque les protéines manquent — comportement compensatoire.
- Lumière UV n’influence pas significativement la maturation sexuelle.
- Cette spécialisation chimique explique en partie l’incapacité à élever S. adipata en conditions de laboratoire contrôlées, problème majeur qui freine la recherche sur cette espèce depuis 40 ans.
Dégâts caractéristiques
[ÉTABLI] Pontes principalement dans figues vertes immatures (contrairement à D. suzukii qui préfère les figues mûres) :
- Pontes l’après-midi jusqu’au crépuscule, exclusivement à l’ostiole.
- Larves se nourrissent des fleurs et de la chair en formation.
- Galeries brunes dans la chair avec frass larvaire visible.
- Chute prématurée des sycones infestés (5 à 15 jours après ponte).
- Perte de récolte documentée : 10 à 60 % selon climat et niveau de population.
Contrôle
[ÉTABLI] Stratégies opérationnelles :
- Pièges chromatiques jaunes + attractif protéique (hydrolysat de levure ou de pois) — capture des femelles avant ponte.
- Hexanol identifié comme attractif puissant (Salinas et al. 2025, Insects) — base pour développement de pièges spécifiques S. adipata en plus des pièges drosophiles.
- Suppression des sycones tombés au sol — chaque sycone est un nid larvaire.
- Filets d’exclusion à mailles fines (≤ 1 mm) — efficaces si posés avant le pic d’émergence (avril en Méditerranée).
- Spinosad (homologation variable selon pays) — applications ciblées en pré-fructification.
- Pas de parasitoïdes spécialisés efficaces documentés à ce jour — limite majeure de la lutte intégrée.
2. Zaprionus indianus — la mouche africaine
Distribution et chronologie d’invasion
[ÉTABLI] Originaire de l’Afrique tropicale, Z. indianus a colonisé en moins de 30 ans une grande partie du globe :
- Brésil — première détection 1999 (Vilela et al. 2001), ravageur majeur des cultures commerciales figuière brésiliennes dès 2001.
- États-Unis — Floride 2005, désormais établie jusqu’au Minnesota et au Québec (recolonisation annuelle depuis les refuges du sud).
- Bassin méditerranéen — détections sporadiques en Italie, Espagne, Israël, Égypte ; populations établies en climats subtropicaux.
- Amérique centrale et Caraïbes — installée.
Morphologie et biologie
[ÉTABLI] Caractéristiques (Ferronato et al. 2019, Journal of Integrated Pest Management) :
- Adulte : 3 à 4 mm, brun, reconnaissable par 5 bandes argentées longitudinales sur le thorax (très caractéristique, diagnostique à l’œil nu).
- Cycle œuf → adulte en 13 jours à 25 °C — extrême rapidité.
- Polyphage extrême : 80+ hôtes végétaux documentés (figue, mangue, raisin, framboise, fraise, pêche, cerise, pomme, banane).
- Tolérance thermique : adultes survivants jusqu’à 38 °C, ce qui est exceptionnel chez les Drosophilidae.
Particularité — ovipositeur non-perforant
[ÉTABLI] Contrairement à D. suzukii, Z. indianus possède un ovipositeur classique non en scie. Conséquence : la femelle ne peut pas pondre dans les fruits intacts. Elle utilise comme sites de ponte :
- L’ostiole ouvert des figues mûres (cultivars open eye).
- Les fentes naturelles dues à la pluie ou au sur-mûrissement.
- Les lésions créées par d’autres ravageurs (Silba adipata, drosophiles, oiseaux, fourmis).
[ÉTABLI] Cette dépendance aux fissures préexistantes rend Z. indianus un ravageur secondaire opportuniste — il aggrave les dégâts initiaux plutôt qu’il ne les initie. C’est précisément pourquoi sa cohabitation avec Silba et D. suzukii en zone méditerranéenne donne des dégâts cumulés très lourds.
Dégâts
[ÉTABLI] En Brésil, Z. indianus a provoqué la chute de la production figuière commerciale de 40 % en 5 ans après son arrivée (Tidon-Sklorz 2003 ; Vilela et al. 2001). Mécanismes :
- Larves multiples par sycone (jusqu’à 50+) — destruction interne rapide.
- Fermentation accélérée par levures et bactéries introduites.
- Dégâts économiques équivalents ou supérieurs à D. suzukii en climat tropical et subtropical.
Contrôle
[ÉTABLI] Stratégies communes avec D. suzukii :
- Pièges à vinaigre + attractif sucré — captures cumulées indistinctement D. suzukii + Z. indianus.
- Récolte précoce et fréquente, élimination des sycones tombés.
- Filets d’exclusion efficaces (taille de maille adaptée).
- Cultivars à ostiole fermé — prévention structurelle.
- Parasitoïdes : Ganaspis kimorum attaque aussi Z. indianus avec efficacité modérée — Walsh-Antzak et al. 2025 (Ecology and Evolution) montrent une efficacité contexte-dépendante, limitée par les défenses immunitaires de Z. indianus dans certains hôtes.
[PROBABLE] Pas de fenêtre phytosanitaire chimique propre à Z. indianus — la lutte est intégrée dans les programmes anti-drosophiles généralistes.
3. Comparaison synoptique des trois espèces
[ÉTABLI]
| Critère | Silba adipata | Zaprionus indianus | Drosophila suzukii |
|---|---|---|---|
| Famille | Lonchaeidae | Drosophilidae | Drosophilidae |
| Spécificité | Monophage F. carica | Polyphage (80+ hôtes) | Polyphage soft fruits |
| Origine | Méditerranée | Afrique tropicale | Asie de l’Est |
| Ovipositeur | Lance perforante | Standard | Scie perforante |
| Fruit hôte | Figue verte | Figue mûre + lésions | Figue mûre intacte |
| Pénétration sycone intact | Oui (ostiole) | Non (besoin lésion) | Oui (peau) |
| Aire couverte 2026 | Méditerranée + US/Mexique émergent | Pantropical + subtropical | Mondial tempéré-méditerranéen |
| Statut figuier France | Présent historique | Sporadique | Présent et installé |
| Lutte biologique disponible | Aucune à ce jour | Ganaspis partielle | Ganaspis kimorum + Leptopilina japonica |
4. Stratégie intégrée pour un verger en climat méditerranéen
[PROBABLE] Recommandation pour les producteurs en zone à pression triple (les trois espèces présentes simultanément) :
- Filets d’exclusion 0,8 mm dès la fin de la floraison (avant ponte de Silba).
- Pièges combinés : pièges jaunes à hexanol pour Silba + pièges à vinaigre+sucre pour drosophiles + Zaprionus.
- Choix de cultivars closed-eye quand commercialement possible — élimine Zaprionus et limite D. suzukii.
- Récolte fréquente + élimination sycones tombés — gestion universelle.
- Lâchers de Ganaspis kimorum quand disponibles régionalement — cible D. suzukii mais effet secondaire sur Z. indianus.
Voir aussi
- Drosophila suzukii — généraliste invasif majeur, fiche détaillée
- Cochenilles — autre ravageur secondaire vecteur de fumagine
- Aclees taiwanensis — charançon spécifique du figuier
- Endosepsis — Z. indianus peut être vecteur secondaire
Sources
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Katsoyannos, B.I. (1983). Field observations on the biology and behavior of the black fig fly Silba adipata McAlpine (Diptera, Lonchaeidae), and trapping experiments. Zeitschrift für Angewandte Entomologie, 95(1), 471–476. DOI : 10.1111/j.1439-0418.1983.tb02670.x — référence historique.
-
Burrack, H.J., Stringer, L.D., Sims, S.R., & Suckling, D.M. (2022). First report of black fig fly, Silba adipata (Diptera: Lonchaeidae), in the United States. Journal of Integrated Pest Management, 13(1), 12. DOI : 10.1093/jipm/pmac007 — détection californienne.
-
Hernández-Ortiz, V., Tovar-Mozqueda, E., Ortega-Casas, R., et al. (2024). The Black Fig Fly, Silba adipata (Diptera: Lonchaeidae): Current Knowledge and Future Research Needs for an Invasive Pest of Fig Production. Insects, 15(11), 883. DOI : 10.3390/insects15110883 — synthèse mexicaine de référence.
-
Belaam-Kort, I., Aroua, I., & Boulahia-Kheder, S. (2021). The black fig fly Silba adipata (Diptera: Lonchaeidae) as an emerging pest in Tunisia: preliminary data on geographic distribution, bioecology and damage. Phytoparasitica, 49(2), 209–222. DOI : 10.1007/s12600-020-00873-w.
-
Sanchez, R.A., Hernández-Ortiz, V., et al. (2025). Sexual Development of Silba adipata (Diptera: Lonchaeidae): Effects of Diet, Ultraviolet Light and Fig Latex. Insects, 16(5), 495. DOI : 10.3390/insects16040365 — rôle du latex et de l’alimentation protéique.
-
Salinas, R., Hernández-Ortiz, V., et al. (2025). Color and Attractant Preferences of the Black Fig Fly, Silba adipata: Implications for Monitoring and Mass Trapping of This Invasive Pest. Insects. PMC : PMC12295857 — hexanol comme attractif puissant.
-
CDFA (California Department of Food and Agriculture) (2024). Pest Profile — Silba adipata. URL : cdfa.ca.gov — statut de quarantaine.
-
Ferronato, F., Lassiter, B., Faedo-Spronk, B., & Roque, F. (2019). African Fig Fly (Diptera: Drosophilidae): Biology, Expansion of Geographic Range, and Its Potential Status as a Soft Fruit Pest. Journal of Integrated Pest Management, 10(1), 20. DOI : 10.1093/jipm/pmz019.
-
Vilela, C.R., Teixeira, E.P., & Stein, C.P. (2001). Nova praga nos figos brasileiros: Zaprionus indianus Gupta, 1970 (Diptera: Drosophilidae). Comunicações da Sociedade Entomológica do Brasil, 1, 1–4. Description première détection brésilienne (1999).
-
Walsh-Antzak, C., Stahlschmidt, Z.R., Roeder, D.V., et al. (2025). Strength of Enemy Release From Parasitoids Is Context Dependent in the Invasive African Fig Fly, Zaprionus indianus. Ecology and Evolution, 15(7), e70754. DOI : 10.1002/ece3.70754 — efficacité parasitoïdes contexte-dépendante.
-
Tovar-Mozqueda, E., Hernández-Ortiz, V., et al. (2024). Bioecological Parameters of the Black Fig Fly, Silba adipata (Diptera: Lonchaeidae), Collected from Fig Crops in Mexico. Insects, 15(11), 883. DOI : 10.3390/insects15110883.
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