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Chancre vasculaire à Ceratocystis ficicola

Fiabilité : haute

En bref. Le chancre vasculaire à Ceratocystis ficicola est la maladie la plus préoccupante du figuier en 2026. Signalé au Japon dès les années 1970 (espèce décrite en 2011), propagé en Méditerranée (Grèce 2018, Italie 2021–2023), organisme de quarantaine sur la liste A2 de l’EPPO depuis 2025. Mortalité documentée 40–50 % en 3 ans en Grèce. Rôle de scolytes ambrosia dans la dispersion suspecté, non démontré. Aucun traitement curatif.

Le chancre vasculaire à Ceratocystis ficicola est la maladie la plus préoccupante du figuier (Ficus carica) à l’échelle internationale en 2026. Signalée au Japon dès les années 1970, elle s’est propagée à la Méditerranée (Grèce 2018, Italie 2021-2023). Inscrite en février 2022 sur l’alert list de l’EPPO (European and Mediterranean Plant Protection Organization), elle est passée en 2025 sur la liste A2, celle des organismes dont l’EPPO recommande la réglementation comme organismes de quarantaine. Aucun traitement curatif n’existe ; la mortalité documentée atteint 40-50 % en trois ans sur certains vergers grecs.

Agent causal

[ÉTABLI] Ceratocystis ficicola Kajitani & Masuya — champignon ascomycète de la famille Ceratocystidaceae, décrit comme espèce distincte en 2011 (Kajitani & Masuya, Mycoscience). Il appartient au complexe Ceratocystis sensu stricto, distinct des autres ravageurs du complexe (C. fimbriata, C. moniliformis etc.).

[ÉTABLI] C. ficicola est un pathogène tellurique (soil-borne) : il colonise le système racinaire et les tissus vasculaires basaux du tronc, induisant une vraie maladie de flétrissement vasculaire (vascular wilt), distincte des chancres opportunistes superficiels causés par les Botryosphaeriaceae.

Distribution et progression historique

[ÉTABLI] Chronologie :

AnnéeÉvénementSource
années 1970Premiers signalements de la maladie au JaponLumia et al. 2026
2011Description de l’espèce C. ficicola (Kajitani & Masuya)Mycoscience
2011-2017Confiné au Japon, où il touche toutes les régions productrices de figuierNARO, multiples
2018Premier signalement en Europe : Grèce (Attica)Tsopelas et al. 2021
2019Confirmation Grèce — île d’Eubée (Euboea)Tsopelas et al. 2021
2021Premiers signalements en Italie : Puglia (Salento)EPPO Reporting
2022Inscription sur l’EPPO Alert List (février 2022)EPPO Global Database
2022Échantillonnage en Sicile (Noto), confirmé en 2023Aiello et al. 2023
2023Confirmation officielle Italie (Salento + Noto)Plant Disease 2023
2025Inscription sur la liste A2 de l’EPPO (organisme de quarantaine recommandé)EPPO

[ÉTABLI] Statut phytosanitaire international : après l’alert list (2022), l’EPPO a inscrit C. ficicola sur sa liste A2 en 2025 — les pays membres sont invités à le réglementer comme organisme de quarantaine. Zone à risque désignée : les régions méditerranéennes où le figuier est cultivé commercialement. Les mesures recommandées visent les plants de Ficus carica destinés à la plantation (EPPO, analyse de risque phytosanitaire).

Symptômes

Sur l’arbre (séquence typique)

[ÉTABLI] Le tableau clinique de C. ficicola est caractéristique et permet un diagnostic différentiel rapide :

  1. Chlorose foliaire dispersée (jaunissement par sections)
  2. Flétrissement progressif des rameaux (wilting)
  3. Défoliation prématurée en saison de végétation
  4. Dieback des branches : mort progressive des extrémités
  5. Mort de l’arbre entier : typiquement en 1 à 3 ans selon la vigueur et l’âge du sujet

Sur le tronc et les branches

[ÉTABLI] Signes pathognomoniques :

  • Chancres déprimés à progression rapide sur tronc et grosses branches
  • Craquelures d’écorce longitudinales
  • Écoulements gommeux marqués (plus abondants que dans les chancres à Botryosphaeria)
  • Décoloration interne du bois en bleu-noir ou brun foncé sur coupe transversale — c’est le signe diagnostic le plus net

Sur le système racinaire

[ÉTABLI] Pathogène tellurique typique : colonisation du système racinaire fin, puis remontée dans les vaisseaux xylémiens vers le tronc. La nécrose racinaire précède souvent les symptômes aériens.

Sévérité documentée

[ÉTABLI] Grèce, Euboea (Eubée), verger de 6 ha (Tsopelas et al. 2021) : sur des arbres plantés depuis 3 ans, 40-50 % des sujets étaient morts. Mortalité totale documentée sur un seul cycle de production.

[ÉTABLI] Japon : signalée depuis les années 1970 (Lumia et al. 2026), la maladie touche toutes les régions productrices de figue et représente la menace phytosanitaire majeure de l’industrie figuière japonaise.

[PROBABLE] Les mortalités italiennes (Salento, Noto) sont en cours de quantification ; les signalements 2021-2023 décrivent des foyers localisés mais avec progression rapide entre sujets adjacents.

Transmission et propagation

[ÉTABLI] C. ficicola se propage par plusieurs voies (Tsopelas et al. 2021 ; EPPO 2022) :

  • Sol infesté : labour de vergers contaminés, transport de terre, débris ligneux. La propagation au sein d’un même verger se fait souvent via les opérations culturales (binage, sarclage racinaire).
  • Matériel de propagation infecté : boutures et plants commerciaux issus de zones contaminées. C’est le mode de diffusion à longue distance documenté entre Japon et Grèce.
  • Eau de pluie ruisselante : dispersion locale entre arbres adjacents.
  • Outils de taille contaminés : transmission directe en absence de désinfection.

[PROBABLE] Vecteurs entomologiques (scolytes / ambrosia beetles) : un rôle de dispersion par coléoptères xylophages est suspecté mais pas formellement documenté pour C. ficicola spécifiquement (contrairement à d’autres Ceratocystis spp.).

[ÉTABLI] Persistance dans le sol : les chlamydospores et débris ligneux infectés permettent une survie de plusieurs années dans le sol. La réplantation immédiate sur un site contaminé conduit à une réinfection quasi-certaine.

Diagnostic

[ÉTABLI] Méthodes :

  • Symptômes visuels : décoloration bleu-noir du bois en coupe + chlorose foliaire + dieback rapide → suspicion forte
  • Isolement sur PDA : colonies caractéristiques avec production de périthèces noirs en forme de col allongé (signature Ceratocystis)
  • Identification moléculaire par PCR sur loci ITS + MS (microsatellites Ceratocystis) + TEF1-α — distingue C. ficicola des autres Ceratocystis sensu stricto
  • PCR en temps réel directement sur le bois (Lumia et al. 2026) : test qPCR ciblant la région ITS1, validé sur 114 échantillons d’arbres inoculés, naturellement infectés ou sains. Il détecte quelques femtogrammes d’ADN du champignon (limite opérationnelle 3 à 10 fg, soit quelques dizaines à une centaine de copies), n’est pas gêné par les extraits de bois, et distingue C. ficicola de C. platani et de 49 autres champignons. Il contourne la principale difficulté de la surveillance : l’isolement du champignon, souvent difficile.
  • Tests de pathogénicité : inoculation sur jeunes plants, observation de la nécrose et réisolement (postulats de Koch)

[ÉTABLI] Diagnostic différentiel critique :

IndicateurC. ficicolaBotryosphaeriaceae (N. dimidiatum, B. dothidea…)
Origine de l’infectionTellurique (racines)Aérienne (blessures, scolytes)
Décoloration boisBleu-noir caractéristiqueBrun foncé à noir
Écoulements gommeuxTrès marquésVariables
Progression vers troncRapide via vaisseauxPlus lente, locale aux blessures
Mortalité arbre entierFréquente (1-3 ans)Possible si tronc atteint
PérithècesPrésents (en col)Pycnides

Gestion

Prévention (seule stratégie efficace)

[ÉTABLI] Compte tenu de l’absence de traitement curatif, la prévention est cruciale :

  • Refus d’introduction : ne jamais introduire de plants ou boutures en provenance de zones où C. ficicola est connu (Japon, Grèce, Italie touchée)
  • Vérification phytosanitaire : exiger un certificat phytosanitaire EPPO-conforme pour tout import de matériel ligneux figue
  • Surveillance phytosanitaire active : signalement immédiat aux services phytosanitaires de tout cas suspect en zone Méditerranée
  • Désinfection rigoureuse des outils entre arbres et surtout entre vergers : hypochlorite de sodium 10 % ou éthanol 70 %
  • Évitement du labour profond en zones suspectes (réduit la dispersion mécanique des inoculums tellurique)

Gestion d’un foyer déclaré

[ÉTABLI] Stratégie consensus (NARO Japon, Tsopelas Grèce, EPPO) :

  • Arrachage immédiat des arbres infectés et de la zone tampon (rayon 5-10 m)
  • Brûlage complet sur place ou en site phytosanitaire (ne jamais composter)
  • Désinfection du sol sur le site de l’arbre arraché — solarisation, fumigation chimique en cas extrême (mais limite d’efficacité pour pathogène tellurique)
  • Délai de replantation : minimum 3-5 ans en figuier, voire jamais sans porte-greffe résistant
  • Replantation possible uniquement sur porte-greffe résistant (voir ci-dessous)

Porte-greffes résistants

[ÉTABLI] Reikodai 1 gō (« 励広台1号 ») — sélection japonaise issue d’une lignée BC1 : un hybride interspécifique entre figuier cultivé et Ficus erecta (figuier sauvage japonais), recroisé sur figuier cultivé. En inoculation par le sol ou par blessure, aucun plant de Reikodai 1 gō n’est mort en 180 jours, contre 64 à 100 % des cultivars et des variétés jusque-là réputées résistantes ; sa résistance égale celle de F. erecta (Morita et al. 2021). Le suivi par qPCR montre que le champignon progresse et se multiplie beaucoup moins dans son bois que dans celui du cultivar ‘Horaishi’ (Shirakami et al. 2022).

[INCERTAIN] Son emploi comme porte-greffe résistant était encore présenté comme une perspective en 2022 (Shirakami et al. 2022). Nous n’avons pas de source sur son niveau de diffusion actuel au Japon, ni sur sa disponibilité hors du Japon.

[PROBABLE] D’autres porte-greffes en évaluation : programmes de sélection en cours dans plusieurs conservatoires italiens et grecs. Aucun n’a encore le statut commercial de Reikodai 1 gō.

[INCERTAIN] La compatibilité greffe variétés européennes ↔ Reikodai 1 gō n’a pas été étudiée systématiquement. Les vergers européens en zone touchée doivent évaluer cette compatibilité au cas par cas.

Traitement chimique

[ÉTABLI] Aucun traitement chimique curatif n’est efficace une fois le pathogène installé dans les vaisseaux. Les fongicides systémiques (triazoles, strobilurines) testés en serre n’ont pas démontré d’efficacité significative.

[ÉTABLI] Le cuivre préventif sur plaies n’a aucun effet contre une infection tellurique (entrée par les racines).

Importance stratégique pour la pomologie figue

[ÉTABLI] C. ficicola est aujourd’hui considéré comme la menace phytosanitaire la plus sérieuse pour la pomologie figuière à l’échelle internationale. Sa capacité à tuer un verger entier en moins de 3 ans et son inscription sur la liste A2 de l’EPPO justifient une surveillance renforcée dans toutes les régions productrices méditerranéennes (France, Espagne, Maroc, Turquie, Algérie, Tunisie — non encore signalées mais à risque).

[PROBABLE] Si l’expansion en Méditerranée se confirme, la résistance variétale et le greffage sur porte-greffe résistant deviendront des leviers stratégiques pour la pérennité de la culture figue en plein champ.

Voir aussi

Sources

Publications scientifiques peer-reviewed (avec DOI)

  1. Kajitani, Y., & Masuya, H. (2011). Ceratocystis ficicola sp. nov., a causal fungus of fig canker in Japan. Mycoscience, 52(5), 349-353. Description originale de l’espèce.

  2. Tsopelas, P., Tjamos, S.E., Bibelas, P., Tzima, A.K., Paplomatas, E.J., Soulioti, N., Wingfield, M.J., & Barnes, I. (2021). Ceratocystis ficicola causing a serious disease of Ficus carica in Greece. Phytopathologia Mediterranea, 60(2). DOI : 10.36253/phyto-12794 — premier signalement européen, documentation 40-50 % mortalité.

  3. Aiello, D., Guarnaccia, V., et al. (2023). First Report of Ceratocystis ficicola Causing Canker and Wilt Disease on Common Fig (Ficus carica) in Italy. Plant Disease. DOI : 10.1094/PDIS-03-23-0464-PDN — confirmation Italie (Puglia, Sicile).

  4. EPPO (European and Mediterranean Plant Protection Organization) (2022). Ceratocystis ficicola — Alert List entry, February 2022. eppo.int — Activities — Plant Quarantine — Alert List Fungi

  5. EPPO Reporting Service (2023). First report of Ceratocystis ficicola in Italy. gd.eppo.int — Reporting Article 7648

  6. Lumia V., Sciarroni L., Gusella G., Del Corpo D., Manetti G., Cesari E. et al. (2026). Development and validation of real-time PCR for in-wood detection of Ceratocystis ficicola, the agent of canker, wood discoloration, and wilt in the common fig tree (Ficus carica L.). Applied and Environmental Microbiology. DOI : 10.1128/aem.00428-26 — test qPCR sur bois ; premiers signalements japonais dans les années 1970.

  7. Morita T., Jikumaru S., Sugawa S., Shirakami N., Yakushiji H. (2021). Evaluation of resistance to Ceratocystis canker in a BC1 population line from interspecific hybridization of fig (Ficus carica) and F. erecta ‘Reikoudai 1 gou’. Japanese Journal of Phytopathology 87 : 76. DOI : 10.3186/jjphytopath.87.76

  8. Shirakami N., Morita T., Jikumaru S., Sugawa S., Yakushiji H. (2022). Quantitative PCR to determine density of Ceratocystis ficicola and understand resistance of BC1 line Reikodai 1 go. Japanese Journal of Phytopathology 88 : 91. DOI : 10.3186/jjphytopath.88.91

  9. EPPO (2025). Pests recently added to the EPPO A1/A2 Lists — Ceratocystis ficicola, A2 in 2025. eppo.int — A1/A2 recent additions ; analyse de risque : pra.eppo.int

Sources institutionnelles

  1. NARO (National Agriculture and Food Research Organization, Japan). Programme de sélection du porte-greffe Reikodai 1 gō (励広台1号) — communication scientifique d’institut, fiche technique disponible auprès de NARO Fruit Tree Research Division.

  2. CABI Compendium / EPPO Global Database — distribution mondiale de C. ficicola à jour 2025.

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